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β-gal染色

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β-gal染色

一、实验原理:

细胞衰老β-半乳糖苷酶染色试剂盒(Senescence β-Galactosidase Staining Kit)是一种基于衰老时SA-β-Gal(senescence-associated β-galactosidase)活性水平上调而对衰老细胞或组织进行染色检测的试剂盒。在普通的光学显微镜下就可以观测到细胞或组织的衰老情况。

细胞衰老β-半乳糖苷酶染色试剂盒,以X-Gal为底物,在衰老特异性的β-半乳糖苷酶催化下会生成深蓝色产物。从而在光学显微镜下很容易观察到变成蓝色的表达β-半乳糖苷酶的细胞或组织。

二、实验方法

对于贴壁细胞:

a. 对于6孔板中培养的细胞,吸除细胞培养液,用PBSHBSS洗涤1次,加入1毫升β-半乳糖苷酶染色固定液,室温固定15分钟。对于其它类型的培养板,固定液及后续溶液的用量参照此比例进行操作。

b. 吸除细胞固定液,用PBSHBSS洗涤细胞3次,每次3分钟。

c. 吸除PBSHBSS,每孔加入1毫升染色工作液。染色工作液的配制方法参考下表。

β-半乳糖苷酶染色液A

10μl

β-半乳糖苷酶染色液B

10μl

β-半乳糖苷酶染色液C

930μl

X-Gal溶液

50μl

d. 37℃孵育过夜,可以用parafilm或保鲜膜封住6孔板防止蒸发。注意:37℃孵育不能在二氧化碳培养箱中进行。

e. 普通光学显微镜下观察。如不能及时观察计数,可以去除染色工作液,加入2毫升PBS4℃可以保存数天;或者加上封片液封片后,4℃可以保存较长时间。

2. 对于悬浮细胞:

a. 离心收集细胞至1.5ml离心管内,用PBSHBSS洗涤1次,加入1毫升β-半乳糖苷酶染色固定液,室温固定15分钟。固定时可以在摇床上缓慢摇动,以避免细胞结成团块。

b. 离心,吸除细胞固定液,用PBSHBSS洗涤细胞3次,每次3分钟。

c. 离心,吸除PBSHBSS,每管加入0.5-1毫升染色工作液。染色工作液的配制方法参考表1

d. 37℃孵育过夜。注意:37℃孵育不能在二氧化碳培养箱中进行。

e. 取部分染色后的细胞,滴加到载玻片上或6孔板内,普通光学显微镜下观察。如不能及时观察计数,可以离心,去除染色工作液,然后加入1毫升PBS4℃可以保存数天。如果离心,取细胞用于涂片,加上封片液封片后,4℃可以保存较长时间。

3. 对于组织切片:

a. 对于石蜡切片先按照常规方法进行脱蜡和水化处理。对于冷冻切片直接按照以下步骤进行。

b. 加入适当体积的β-半乳糖苷酶染色固定液,以充分盖住组织为宜,室温固定不少于15分钟。

c. PBS浸泡洗涤组织3次,每次不少于5分钟。

d. 吸除PBS,加入适当量的染色工作液。染色工作液的配制方法参考表1

e. 37℃孵育过夜,可以用parafilm或保鲜膜封住防止蒸发。最好把整个切片浸泡在染色工作液中。

注意:37℃孵育不能在二氧化碳培养箱中进行。

f. 普通光学显微镜下观察。如不能及时观察,加上封片液封片后4℃可以保存较长时间。